鉴别寄主：
①甜菜：幼嫩叶片明脉，随后叶片出现上卷或下卷。由于明显的脉突及瘤突使叶背面粗糙，在叶柄及大叶脉经常有韧皮部液滴泌出，根部横断面可观察到暗色同心环状韧皮部坏死。
②黄瓜：幼苗死亡，成株上的新生部分矮化，节间缩短，叶片边缘刀片状上卷，生长点向上簇生，果实不规则或畸形。
③番茄：对生幼嫩叶片扭曲，相向上卷，有时横贯在叶柄顶部。叶片变厚、易脆裂，黄化并伴有叶脉变紫。植株表现为向上钢挺。果实早熟变红，植株衰败至死亡。
④烟草：幼叶变小、膨大，叶脉扭曲，边缘下卷，使生长点成簇状。几周后可恢复正常生长，在所有烟草属种类上都有这种“恢复”现象（Bennett，1971）。
⑤菜豆品种Bountiful：经子叶期接种的植株，新生的三叶簇基部极度向上卷曲。植株可能立即死亡，或腋芽增生，产生柔弱、卷曲的小叶片，并呈现明脉、叶脉膨胀及上表面皱缩。
枯斑寄主：无。
体外稳定性：利用含有病毒的提取物，人工饲喂后测定介体的传毒能力来确定病毒的稳定性（Severin&Freitag，1933；Bennett，1935）。
①钝化温度：80℃。
②稀释终点：10-3（甜菜根汁液），2.4*10-4（介体提取物）。
③体外存活期：8d（室温），11个月（-18℃，甜菜根汁液）。
另外，病毒的侵染性在常温干燥的甜菜病组织中可保持4个月，而在氯化钙吸湿条件下可保持8年以上。在pH9.1的环境下，韧皮部泌出液可保持侵染性2h，但在pH2.9或更低的pH环境下将丧失侵染性。病植株汁液的侵染性很容易因任何沉淀处理而丧失，包括对植物汁液的加热或加入乙醇（Bennett，1935）。
血清学检测：此病毒具有较强的免疫原性，但仅在植物体内以低浓度存在。肌肉注射家兔已获得抗血清。凝胶聚集血清学检测的结果较琼脂双扩散检测的灵敏度高100倍，而且仅4倍低于叶蝉植物传毒检测的灵敏度（Mumford，1977）。ELISA方法可检测到单头叶蝉体内的病毒，并与叶蝉传毒能力的检测灵敏度一致（Mumford&Thornley，1978）。
根据毒力、症状和寄主范围可对北美株系进行鉴别，但血清学关系尚为得到确定。在这些株系之间没有关于在植物寄主或介体昆虫上的相互干扰或交叉保护的报道。证据表明，发生在北美的病毒是其介体由地中海地区传入的，也可能与早期的殖民者有关，病毒分离物及介体间的交互传播试验表明发生在这两个地区的病毒基本上是相同的（Bennett，1971）。
四种由叶蝉传播病毒所导致的黄化型病害-阿根廷甜菜曲顶病（Argentine beet curly top）、巴西甜菜曲顶病（Brazilian beet curly top）、巴西番茄曲顶病（Brazilian tomato curly top）以及澳大利亚菜豆夏季死亡病（summer death of bean in Australia，）与甜菜曲顶病具有许多相似之处，暗示在这些病原之间可能具有某种亲缘关系。这些病毒虽均不能被甜菜叶蝉所传播，但在症状、寄主范围、传播条件，介体与病毒的关系，以及病毒的基本特性等方面存在相似之处。另外，针对北美病毒选育的甜菜品种在抗病性水平上与对阿根廷病毒和巴西病毒的抗性相同的。与此相似，针对北美病毒选育的菜豆抗性品种在澳大利亚同样能够抗菜豆夏季死亡病毒（bean summer death virus）。对这些病毒间的血清学关系尚无研究。
甜菜曲顶病毒粒子配对（geminate）存在，并可能含有DNA的现象显示了它作为双生病毒的基本特征。
电镜观察：用传统方法已证明甜菜曲顶病毒仅局限于韧皮部，并在其中运输（Bennett，1937）。电子显微镜下可看到韧皮部薄壁细胞核中，有单个或成对存在的病毒粒子，但不存在于这些细胞的细胞质中，也不存在于筛管或伴细胞中（Esau，1977）。病毒粒子与核仁并无任何关系，有时配对粒子之间有丝带状连接。荧光抗体技术检测表明：在侵染早期病毒粒子在细胞核中，以后遍及整个韧皮部薄壁细胞质中（Mumford&Thornley，1977）。也在与形成层附近的少数皮层细胞中检测到病毒抗原。
检疫危险性评价：本病的病原甜菜曲顶病毒可由叶蝉以持久性方式传毒主要危害甜菜，季良进行危险性评价时危险度值9分，为高危有害生物。国内在烟草已有发生，因无人为传播途径，为非检疫性有害生物。
地理分布：发生于非洲、欧亚大陆、地中海地区、北美洲、南美、中美地区（西部干旱和半干旱地区）；阿根廷、玻利维亚、巴西、加拿大、哥斯达黎加、塞浦路斯、埃及、印度、伊朗、意大利、墨西哥、波多黎各、西班牙、土耳其、美国和乌拉圭。
检疫国家地区：阿尔巴尼亚、保加利亚、荷兰、秘鲁、摩洛哥、欧盟、斯洛伐克、斯洛文尼亚、土耳其、印度尼西亚。
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