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2.4. Chemical and microbial analyses
Analysis of DM and CP concentration in the experimental
diets, excreta and probiotic products was done according to
AOAC (1990) methods (930.05 and 976.05, respectively). The
GE was measured by using the bomb calorimeter (model
1261, Parr Instrument Co., Moline, IL), and chromium
concentration was determined with an automated spectrophotometer
(Jasco V-650, Jasco Corp., Tokyo, Japan) according
to the procedure of Fenton and Fenton (1979).
The microbiological assay of faecal samples (d 14 and 28)
and intestinal digesta (d 28) was conducted by culturing in
different media for the determination of total anaerobic
bacteria (Tryptic soy agar), Bifidobacterium spp. (MRS agar),
Lactobacillus spp. (MRS agar+0.02% NaN3+0.05% L-cystine
hydrochloride monohydrate), Clostridium spp. (TSC agar) and
coliforms (violet red bile agar). The microbiological assay of
probiotic products was also carried out by culturing technique.
The L. acidophilus was enumerated using MRS agar+0.02%
NaN3+0.05% L-cystine hydrochloride monohydrate, B. subtilis
by using plate count agar, S. cerevisiae and A. oryzae by potato
dextrose agar. The anaerobic conditions during the assay of
anaerobic were created by using gas pack anaerobic system
(BBL, No. 260678; Difco, Detroit, MI). The tryptic soy agar (No.
236950), MRS agar (No. 288130), violet red bile agar (No.
216695), plate count agar (No. 247940), and potato dextrose
agar (No. 213400) used were purchased from Difco Laboratories
(Detroit,MI), and TSC agar (CM0589) was purchased from
Oxoid (Hampshire, UK). The pH of probiotic products was
determined by pH meter (Basic pH Meter PB-11, Sartorius,
Germany).
2.5. Small intestine morphology
Three cross-sections for each intestinal sample were
prepared after staining with azure A and eosin using standard
paraffin embedding procedures. A total of 10 intact, welloriented
crypt-villus units were selected in triplicate for each
intestinal cross-section as described previously (Jin et al.,
2008). Villus height was measured from the tip of the villi to
the villus crypt junction, and crypt depth was defined as the
depth of the invagination between adjacent villi. All morphological
measurements (villus height and crypt depth)
were made in 10-μm increments by using an image processing
and analysis system (Optimus software version 6.5,
Media Cybergenetics, North Reading, MA).

2.4 化学和微生物分析
在试验日粮干物质和粗蛋白含量的分析中,排泄物和益生菌产品是根据AOAC(1990)方法(分别为930.05和976.05 )分析。使用弹式量热计(model 1261, Parr Instrument Co., Moline, IL)测定总能量,根据芬顿博士(1979)的使用自动化分光光度计确定铬浓度。
第14和28天排泄物样本和第28天的肠道消化物的微生物分析,将样品在不同培养基中培养,测定总厌氧菌(胰酶解物大豆琼脂),双歧杆菌(MRS培养基),乳杆菌种(MRS培养基+0.02% NaN3+0.05%L胱氨酸盐酸盐水化合物),梭菌属某些种(TSC培养基)和大肠杆菌群(紫色红胆汁琼脂)。通过培养技术对"益生菌"产品进行了微生物分析。嗜酸乳杆菌用MRS培养基+0.02% NaN3+0.05%L胱氨酸盐酸盐水化合物培养,枯草芽孢杆菌通过琼脂培养基平板计数,酵母菌和米曲霉菌通过土豆葡萄糖培养基计数。通过使用厌氧袋厌氧系统创造厌氧条件,(BBL, No. 260678; Difco, Detroit, MI)。大豆胰酶解物的琼脂(No.236950),MRS琼脂培养基(No. 288130),结晶紫中性红胆盐琼脂(No.216695),平板计数琼脂(No. 247940),和马铃薯葡萄糖培养基(No. 213400)的使用是从Difco实验室((Detroit,MI)购买的,和TSC培养基是从Oxoid (Hampshire, UK)购买的。益生菌产品的pH值由pH计(Basic pH Meter PB-11, Sartorius,Germany).测定。
2.5 小肠形态学
每个肠道样本取三横截面,使用标准的石蜡包埋程序与天青A和曙红染色。共有10个完好无损,良好的导向隐窝绒毛单位被选定为每个肠道截面,每个样品一式三份的 (Jin et al.2008)。从绒毛尖端绒毛到隐窝交界处测量绒毛高度,这个被定义为相邻绒毛内陷深度和隐窝深度。所有形态测量(绒毛高度和隐窝深度)通过使用一个图像处理的分析系统(擎天柱软件版本6.5,网络媒体遗传学,北读,MA),增量为10-μm。
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第1个回答  2012-05-16
第3.2.2章。 在肠道内细菌数量
科幻小说的饮食饲养的猪有更大的(Pb0.05)乳酸菌合欢属和
更少的梭状芽孢杆菌。(Pb0.01),spp大肠杆菌(Pb0.05)的人口
在比饲养的猪回肠LF饮食(表8)。此外,
更高的(Pb0.05)如盲肠双歧杆菌合欢属人口
在饲养的猪被观察到科幻小说的饮食。抗生素没有影响
回肠微生物种群;然而,colistin饮食饲养的猪
双歧杆菌的数量减少了。(Pb0.05),spp大肠菌群吗
(Pb0.01)在盲肠,然而,lincomycin喂养
饮食会降低(Pb0.05)如盲肠spp梭状芽孢杆菌。
人口。
3.2.3。 小肠形态学
不同的益生菌产品和抗生素没有
影响形貌的不同的部分
小肠,除了更大(Pb0.05)检高度:地穴深度空肠和回肠注意到在饲养的猪
lincomycin饮食(表9)。
4。讨论
先前的研究对益生菌的缺乏信息
生产方法使用,然而,准备
益生菌的方法是相当普遍的低频(帕特尔等人,2004)。
益生菌产品目前用于研究不同
从先前的报道在提取益生菌
细菌是直接添加到饮食。在这项研究中,
微生物生物量生长的CB直接喷上
承运人(玉米和大豆)获得LF益生菌
产品。如果科幻小说的益生菌产品、玉米和大豆
晚餐是用作基质在发酵过程中,作为一个
益生菌的载体的微生物。我们以前所报告
这multi-microbe益生菌产品准备的科幻小说的方法
是比准备的益生菌产品淹没吗
液态发酵为了改善性能,营养
保留和减少有害肠道细菌在肉鸡
(垫片等人,2010)。在目前的研究中,如果和科幻小说的方法
利用饭被用作率为增长潜力的基质益生菌的微生物在最佳
条件。追问

在线翻译我也会呀,就是不通顺呀,能不能帮我通顺的翻译一下呀?

第2个回答  2012-06-08
2.4。化学和微生物分析
分析糖尿病和蛋白的浓度在实验
饮食,排泄物和益生菌产品,是根据
(1990)的测定方法(930.05和976.05,分别)。本
通用电气测量用弹式量热计(模型
1261,幼鱼仪器有限,莫林,白介素),和铬
浓度测定的自动分光光度计
(总v-650,总公司,东京,日本)按照
对程序的芬顿和芬顿(1979)。
微生物的检测粪便样本(14和28)
和肠道食糜(28)进行培养
不同介质的测定总厌氧
细菌(胰酶大豆琼脂),双歧杆菌。(琼脂),
乳酸杆菌。(刘健琼脂+ 0.02%叠氮化钠+ 0.05%胱氨酸
盐酸盐一水合物),(台糖琼脂)和梭菌属。
大肠菌群(紫红胆汁琼脂)。微生物的检测
益生菌产品进行了培养技术。
对嗜酸乳杆菌是列举使用琼脂+ 0.02%
叠氮化钠+ 0.05%胱氨酸盐酸盐一水合物,枯草杆菌
采用平板计数琼脂,酿酒酵母和曲霉的马铃薯
葡萄糖琼脂。厌氧条件的测定
厌氧是由使用气体厌氧系统
(桶,260678号;培养基,底特律,米)。胰蛋白酶大豆琼脂(号
236950),琼脂(288130号),紫红胆汁琼脂(号
216695),平板计数琼脂(247940号),和马铃薯葡萄糖
琼脂(213400号)用来购买了从琼脂实验室
(底特律,米),与台糖琼脂(cm0589)购买
蛋白(新罕布什尔州,英国)。值的益生菌产品
确定的值(基本表上举,缝纫机,
德国)。
2.5。小肠形态
三横截面为每个肠道样本
准备染色后,蔚蓝的和使用标准
石蜡包埋程序。共有10个完整的,welloriented
绒毛单位被选定为每个一式三份
肠道截面如前所述(金等人。,
2008)。绒毛高度测量从冰山的绒毛
绒毛隐窝交界处,和隐窝深度的定义是
深度凹陷相邻绒毛。所有形态
测量(绒毛高度和隐窝深度)
是在10-μ米递增使用图像处理
分析系统(擎天柱软件版本6.5,
媒体cybergenetics,北阅读,马)。